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组距=(最大值-最小值)÷组数。组距分组是将全部变量值依次划分为若干个区间,并将这一区间的变量值作为一组。下限和上限之间的距离,即为组距。
所得LD50及全部有关参数与正规概率单位法相近。
由于寇氏法及其改良法都是根据结果直接按公式计算,不需要因为数据不精确而进行各种修改,省去了其他更复杂的统计计算。
1、IC50和EC50的计算一般需要测定5个以上的点,再通过曲线拟合得到函数计算而得,或者假设IC50(EC50)附近的点连成直线计算而得等,但这都存在较大的误差。
2、根据线性公式计算抑制率为50%时的Y值,计算10为底,计算值为指数的冥,结果即为IC50。
3、excel如何计算ic50:先将化合物浓度取以10为底的对数。使用excel中的函数:LOG10。将抑制率转化为概率单位。具体做法是:在“统计”一栏中,取函数NORMSINV+5。
4、如果药物有抑制细胞活性的作用,习惯上称之为IC50(称呼而已)。【实例操作1】细胞毒实验计算IC50 · 细胞毒实验:SRB法,MTT法 · 阴性对照组Concrol:给药浓度为0的含细胞的孔,实验中以该组细胞活力当成100%。
5、pIC50值:IC50值的10的负对数。Ki值: 检测到50%抑制效果时,抑制剂的浓度(采用Michaelis-Menten动力学计算获得)。
6、一般将剂量和抑制率经一定变换后用非线性回归拟合计算。
1、根据线性公式计算抑制率为50%时的Y值,计算10为底,计算值为指数的冥,结果即为IC50。
2、打开数据,依次点击:analyse--regression,打开多元线性回归对话框。将因变量和自变量放入格子的列表里,上面的是因变量,下面的是自变量。
3、先用回归分析建立浓度和清除率的回归模型,再将清除率代入模型方程中就可求出相应的浓度。
它的值取决于实验所用的酶和底物浓度,当酶的浓度固定时,IC50值与Ki、Km和 竞争性抑制剂底物浓度[S]呈如下关系: 根据该方程式,当底物浓度大于Km值时,IC50值高于Ki值,尤其当底物浓度较高时,Ki值偏低更加明显。
根据线性公式计算抑制率为50%时的Y值,计算10为底,计算值为指数的冥,结果即为IC50。
③反竞争性抑制的动力学方程为:V=Vmax[S]/{Km+[S](1+[I]/Ki)} 带入数据即可。
方法1:前面已演示,用Excel计算Mean,SD和N,转换成百分数后用GraphPad计算。注意选择normalized Response-Variable slope。方法2:XY→Use sample data→Dose response,直接将吸光度值输入GraphPad近似计算。
excel如何计算ic50:先将化合物浓度取以10为底的对数。使用excel中的函数:LOG10。将抑制率转化为概率单位。具体做法是:在“统计”一栏中,取函数NORMSINV+5。
使用Excel计算IC50 首先将数据输入Excel中 因为药物浓度与抑制率的线性关系并不理想,因此需要用药物浓度的对数与抑制率作图。
将实验所得的数据填写入图表中,注意x轴写入的是log[药物],比如说你加入的药物浓度分别为1-100000nM,那首先你必须先将这个浓度进行换算,一个有效的方法就是在Excel中进行计算,通过log[浓度]获得对于的对数值。
1、根据线性公式计算抑制率为50%时的Y值,计算10为底,计算值为指数的冥,结果即为IC50。
2、先将化合物浓度取以10为底的对数。使用excel中的函数:LOG 将抑制率转化为概率单位。
3、打开spss,建立变量。(需要建立三个变量,分别是浓度,抑制率,和总数。小数位数按照实际要求设置。如下图所示。)输入数据。总数用1或者100,其他按实际输入 开始计算。
4、IC50:半数抑制浓度(对应左图),Y轴的研究指标随浓度递减。EC50:半数有效浓度(对应右图),Y轴的研究指标随浓度递增。右图其实是把Cell Inhibition当成药物的效应,与药物浓度呈正相关。
5、很多软件可以计算IC50,例如graph p.ad,origin等。你这个数据显示没有达到平台期,无法精确计算IC50。
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